Накатите белого вина пополам с минералкой и льдом , примите прохладный душ  , раскройте настежь все окна ( для свежего ветерка)  и посмотрите романтическое кино. ДОМА.

На всякий случай - синдромы дирофиляриоза  идентичны синдрому сердечной недостаточности.
Но если собака дегельминтизируется РЕГУЛЯРНО ( как в Вашем с Зигги случае) - то причин для преждевременной паники быть не должно.

............................................

сердце собаки, умершей от дирофиляриоза.

беленькие ниточки - это глисты.

какой кошмар. Упаси Боже упаси и людей и зверей.

как от этого уберечься наверняка?
чем лучше отглистогонить собак?

пойду поищу и в сети.

Отредактировано Ziggy (09-07-2011 23:25:27)

Как спагетти... Пора ужинать...
Елена Типикина
А где можно взглянуть на актуальные ареалы, где возможно заражение ими?..
Ведь та же средняя полоса входит в группу риска, получается.

LAMP в диагностике дирофиляриоза собак взято ОТСЮДА: -   http://tagvetklinik.ru/index.php/section-table/87-lamp-

наиболее внятный , из найденных мною на просторах тырнета  материал о способах ранней диагностики дирофиляриоза.

Карташов В.В., Карташов С.Н., Ермаков М.А., Ключников А.Г., Павлова Р.В., Миронова А.А., Калабеков М.И.
ГНУ Северо-Кавказский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт, г. Новочеркасск, Россия
ГНУ Всероссийский НИИ Ветеринарной Вирусологии и Микробиологии Россельхозакадемии, г. Покров, Россия

Введение.

Дирофиляриозы – инвазионные заболевания плотоядных, вызываемые нематодами из семейства Filariidae, рода Dirofilaria. Известно два вида возбудителей: Dirofilaria immitis (паразитирует в сердце и легочной артерии собак, кошек, лисиц и волков) и Dirofilaria repens (локализуется в подкожной соединительной ткани собак и лисиц). Промежуточными хозяевами обоих видов являются комары сем. Culicidae, родов Culex, Aedes, Anopheles.

D. immitis, паразитирующие в предсердиях и желудочках сердца, нарушают правильную циркуляцию крови, вызывают расстройства сердечной деятельности, эндокардит, эмболию и тромбоз кровеносных сосудов, что приводит к гибели собак [2].
В последние годы отмечена тенденция к широкому распространению дирофиляриозов и расширению их ареала не только на юге, но и в средней полосе России. Основными причинами такого неблагополучия являются неограниченные перемещения животных из одного региона в другой, ввоз зараженных собак из других стран, ограничение использования химических средств защиты от промежуточных хозяев – комаров, а также недостаточный арсенал антгельминтиков против половозрелых дирофилярий.

Наилучшим вариантом является диагностика дирофиляриоза на ранних этапах развития инвазии. Как правило, это микроскопическая идентификация микрофилярий в нативном мазке крови, а также модифицированный метод Кнотта [1]. Однако ни один из этих методов не может исключать дирофиляриоз окончательно при небольшом количестве циркулирующих в крови личинок, поскольку эффективность такой диагностики зависит от ряда факторов (продолжительности инвазии, интенсивности микрофиляремии и др.).
Для видовой дифференциации используют специальные методы окраски микрофилярий, однако в силу сложности и трудоемкости эти методы неприменимы для рутинной диагностики. Использование полимеразной цепной реакции позволяет устранить все недостатки применяющихся на сегодняшний день методик, поскольку обладает высокой специфичностью и чувствительностью, технической простотой, в связи с чем этот метод применим для рутинных диагностических исследований.

Исследования  японских  ученых  [3] по разработке новой молекулярно-генетической  амплификационной  технологии –  loop-mediated  isothermal  amplification  (LAMP) –  показали высокую  чувствительность  и  специфичность,  многократно превышающие технологии ПЦР, а также высокую амплификационную эффективность, которая достигается при изотермальных условиях реакции. Такая технология явилась основой модифицированных методов LAMP и успешно применяется для диагностики значительного количества микроорганизмов. Вместе  с  тем,  наиболее  важным  является  выявление   возбудителя  непосредственно  в  крови, поэтому целью исследования явилась разработка  прямого ускоренного метода выявления возбудителя заболевания в крови собак.
Задача исследования – сравнить эффективность стандартной ПЦР и LAMP в диагностике дирофиляриоза у собак.

Материалы и методы.

В качестве диагностического материала послужила кровь от 400 собак, владельцы которых обращались в ветеринарные клиники г. Ростова-на-Дону, Таганрога, Таганрог и Новочеркасска по разным причинам. Исследования на дирофиляриоз проводилось тремя методами: усовершенствованный метод Кнотта, методом ПЦР и LAMP. Выделение ДНК из образцов крови, молока и мазков производили набором «ДНК-Сорб B» (ФГУ ЦНИИЭ Роспотребнадзора, г. Москва) в соответствии с рекомендациями изготовителя. Исследования проводили с использованием видоспецифических праймеров для D. immitis, фланкирующих участок в 420 н.п. COI гена. Образцы, которые оказались положительными на дирофиляриоз по Кнотту повторно исследовались в стандартной ПЦР и LAMP. Для проведения последней было использовано 3 пары праймеров (F3, B3, FIP, BIP, LF, BF).

Результаты исследований.

Первые результаты исследования крови по Кнотту показали наличие собак с микрофиляриемией. Наибольшая зараженность собак дирофиляриозом отмечалась в Новочеркасске – 10% (10 собак из 100). В Ростове-на-Дону, Шахтах и Таганроге этот показатель составил 3%, 3% и 2% соответственно. В среднем зараженность собак составила 4,5%. Все позитивные пробы крови были исследованы методом ПЦР с видоспецифичными праймерами к D. immitis, в результате чего было установлено присутствие этого гельминта у 88,9% собак с микрофиляриемий (16 из 18 собак). Исследование этих проб крови в ПЦР с видоспецифичными праймерами к D. repens подтвердило наличие у остальных собак «кожной» формы дирофиляриоза.

Все положительные по дирофиляриозу пробы были исследованы с использованием LAMP-технологии.  Учитывая  отсутствие  реагентов,  используемых  японскими  коллегами,  трудности  их приобретения  и  их  высокую  стоимость,  были  проведены предварительные  эксперименты  по  оптимизации  условий реакции. Амплификацию выполняли в изотермальном режиме: 63°С – 120 минут; 80°С – 2 минуты. Визуализацию полученных ампликонов проводили после  электрофореза в 2% агарозном геле.
Полученные результаты оказались на 100% сопоставимы со стандартным вариантом ПЦР. Использование метода диагностики без использования дорогостоящих амлификаторов позволяет внедрить его в диагностическую практику ветеринарных клиник, лабораторий, школ собаководства и других учреждений специального назначения.

Заключение.

Зараженность домашних собак D.immitis и D.repens в наиболее крупных городах Ростовской области по результатам исследований составила в среднем 4% и 0,5% соответственно. В лабораторную практику ветеринарных клиник может быть внедрен  эффективный  безаппаратный метод диагностики дирофиялриоза, основанный на изотермальной амплификационной технологии, обладающий высокой  специфичностью,  высокой  чувствительностью и позволяющий выявлять возбудителя заболевания в течение 4-5 часов от начала исследования непосредственно  в  клиническом  материале  от  собак.  Проведенные клинические  испытания  LAMP-варианта диагностики дирофиляриоза подтвердили  его  высокую  специфичность и  диагностическую  эффективность.

Литература.

    Бескровная Ю.В. Идентификация микрофилярий Dirofilaria spp.  с помощью ПЦР / Ю.В. Бескровная, С.А. Нагорный // Матер. докл. науч. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». – вып. 9. – Москва. – 2008 . – с. 73-75.
    Simon F., Claudio G. Heartworm infection in human and animals. // Ediciones Universidad de Salamanca. – 2001. – 210 p.
    Yasuyoshi Mori, Tsugunori Notomi Loop-mediated isothermal amplifi  cation (LAMP): a rapid, accurate, and cost-effective diagnostic method for infectious diseases. – J Infect Chemother. – 2009. – №15. – p. 62–69.

Не надо молчать. Я оказалась  НЕПРАВА.Вы - права.

углубилась в тему , поняла что за пять лет ( столько времени прошло со времени написания "Злой Нити" во "Льве" )
ареал заболевания СТРЕМИТЕЛЬНО расширился и в этой связи я  искренне ПРИНОШУ ВАМ ИЗВИНЕНИЯ за резкий тон моего поста.

Пожалуйста, напишите лучше адрес клиники , где в ваших краях делают достоверный анализ на носительство микрофилярий.
Украина - в зоне ОСОБОГО риска по этой инвазии.

добавте в список Приморский край. Первые случаи были зарегистрированные еще лет 8 назад... и сейчас сплошь и рядом. Я в целях профилактики даю Диронет собакам три - четыре раза за комаринный сезон, начиная с апреля по октябрь.

Я делаю анализы в "Алден -Вете". В Киеве не однозначное отношение к этой клинике, есть много косяков в лечении животных. Мне повезло с врачем - она наблюдает Альку с полугода и я очень довольна. Клиника на Героев Днепра, врач - Валентина Вячеславовна. Если она из этой клиники уйдет, уйду за ней.Так что именно этого врача я могу рекомендовать, анализ на дирофилярии они делают в своей лаборатории. Для профилактики летом обрабатываю СТРОНГХОЛДОМ -http://zootorba.com.ua/index.php?productID=2412

беда к нам пришла нешуточно, похоже.........
Дирофиляриоз - не аскариды. это СМЕРТЕЛЬНОЕ заболевание собак и людей.

например:

Инфекционный трахеобронхит (питомниковый кашель)

Питомниковый кашель - это контагиозное заболевание дыхательных путей, характеризующееся кашлем, который продолжается от нескольких дней до  в течение нескольких недель. Синдром заболевания обусловлен действием возбудителей бактериальной и вирусной природы и обычно обнаруживается при скученном содержании животных, поступивших из разных регионов. Иногда это заболевание наблюдается у изолированных особей, например после посещения выставки.

Возбудители питомникового кашля

Основные возбудители инфекции:

   - Bordetella bronchiseptica
   - Вирус параинфлюэнцы
   - Вирус чумы   
   - Пастереллы   
   - Микоплазмы   
   - Стафилококки   
   - Стрептококки   
   - Коринебактерии   
   - Колибактерии   
   - Уробактерии

Редко встречающиеся возбудители инфекции:

   - Аденовирус собак
   - Герпесвирус (CHV)

Основной возбудитель инфекционного трахеобронхита - бактерия Bordetella bronchiseptica. Она часто сопутствует вирусной инфекции. После инкубационного периода, длящегося при­ мерно три дня, собака начинает кашлять и у нее появляются гнойные выделения из носа. Возбудителями заболевания могут быть разные вирусы. Вирусы параинфлюэнцы (пара­ гриппа) вызывают легкое воспаление в области носоглотки и кашель, который длится в течение нескольких дней. Этот высококонтагиозный возбудитель передается находящимся поблизости собакам. Разные микоплазмы, присутствующие в организме животного, могут усилить патогенное действие других микроорганизмов, хотя сами клинику заболевания
не вызывают.

Наиболее распространенной клинической формой питомникового кашля является трахеобронхит. Для него характерно наличие сухого, резко выраженного продолжительного кашля. Этот симптом может исчезнуть менее чем через неделю или - при более тяжелой фор­ме заболевания - сохраняться в течение нескольких недель. Часто одновременно с кашлем отмечается воспаление конъюнктивы, синусов дыхательных путей, миндалин и глотки. Но, как правило, на общем состоянии здоровья собаки это не отражается. Гораздо реже у собак с ослабленной иммунной защитой наблюдается более ярко выраженная форма заболевания, проявляющаяся в форме пневмонии, которая сказывается на общем состоянии животного (общая слабость, потеря аппетита, повышение температуры и т. д.). В этом случае заболевание длится несколько недель.

Диагноз легче ставить при скученном содержании животных, так как кашель быстро передается другим животным. Лабораторную диагностику проводят для выявления вышеуказанных возбудителей, а также для более точного выбора методики лечения. Для исследования можно использовать секрет из носовой полости, что позволяет обнаружить вирусы и бактерии. Для того чтобы выявить питомниковый кашель у изолированного животного, необходимо искать и другие возможные заболевания, имеющие аналогичные симптомы. Лабораторный анализ в этом случае имеет целью подобрать наиболее подходящий курс лечения.

Для лечения применяются антибиотики в виде аэрозолей. Если с момента появления первых симптомов прошло менее 48 часов, можно попробовать ввести сыворотку против основных возбудителей болезни. Для улучшения самочувствия животного можно использовать противокашлевые средства. Проведение профилактических мероприятий снижает риск возникновения заболевания. Очень важно, чтобы гигиенические условия в питомнике соответствовали норме (постоянная температура, удобство проведения дезинфекции). В распоряжении собак должна находиться площадка на открытом воздухе. Карантин позволяет определять состояние собак перед их введением в основную группу животных, а также заблаговременно проводить вакцинацию. Существуют различные вакцины, их эффективность примерно одинакова.

Беспокоит меня моя собака. Точнее правая передняя лапа. На рыси пока не устал и на шаге - ничего не заметно. На галопе переносит вес на левую переднюю, правая в локте при движении отставлена. В статике бережет лапу, сегодня она даже подрагивала, когда он что-то нюхая, попытался прочно на неё встать. Кроме того, он постоянно спотыкается, оступается именно этой лапой. Вечные лизания лап списываю на недостаточную нагрузку в последний почти месяц (но вдруг это тоже симптом)
Никаких травм (окромя драки, но это было вначале мая и постарало плечо левой лапы) не было, лапы осматривала уже раз тысячу - когти целы, мякиши и между ними цело, вся лапа нормальная, здоровая на вид. Собака не реагирует на прикосновения, ощупывания на всем протяжении от лопатки и до когтей (может терпит, но тогда он замирает обычно, а тут без реакции), на сгибания и разгибания во всех суставах. Я каждый пальчик покрутила-прощупала на всех четырех. Не знаю что это может быть.
Единственное предположение, что он долбанулся лапой об бордюр (перед домом две дорожки перпендикулярно нашему пути с бордюрами, об которые он уже не раз с детства ушибался/падал, но всегда обходилось.)
Может, есть у кого какие-нибудь мысли?

кормлю натуралкой, последнее время только рубец + фрукты + молочка. Мне кажется, что это либо смещенка, либо нервной природы.

Зимой он подушечки лижет - это понятно, что от реагентов. Сейчас лижет внутренние части передних лап от середины передплечья вниз, запястье и пясти, заканчивая подушечкой 5 пальца.

Плечелопаточный сустав и еще какой-то?
сегодня хромота сильнее, кажется, что дело в запястном суставе, но хз.

musena
Спасибо